間充質(zhì)無血清培養(yǎng)基是為避免胎牛血清批次差異、動(dòng)物源污染及倫理風(fēng)險(xiǎn)而開發(fā)的化學(xué)成分明確或限定的培養(yǎng)體系,廣泛應(yīng)用于細(xì)胞治療、再生醫(yī)學(xué)及藥物篩選。其以高穩(wěn)定性、低免疫原性、支持?jǐn)U增與多向分化為核心優(yōu)勢(shì)。若使用不當(dāng),易導(dǎo)致細(xì)胞貼壁不良、增殖停滯、表型漂移甚至死亡。
間充質(zhì)無血清培養(yǎng)基應(yīng)遵循解凍規(guī)范、操作無菌、換液及時(shí)、凍存得法的原則,才能實(shí)現(xiàn)養(yǎng)得活、擴(kuò)得快、性狀穩(wěn)。
一、使用前準(zhǔn)備
培養(yǎng)基解凍:
從–20℃取出后,于4℃冰箱緩慢解凍過夜,禁止37℃水浴快速融化,以防生長(zhǎng)因子失活;
預(yù)熱平衡:
使用前在37℃水浴或培養(yǎng)箱中預(yù)熱30分鐘,并恢復(fù)至pH7.2–7.4(部分含酚紅指示劑可目視判斷);
添加補(bǔ)充劑(如適用):
某些基礎(chǔ)培養(yǎng)基需臨用前加入谷氨酰胺、bFGF等,按說明書比例無菌操作加入,混勻后立即使用。
二、細(xì)胞接種與培養(yǎng)操作
接種密度控制:
原代或傳代時(shí)建議密度為3,000–5,000cells/cm2,過低易致細(xì)胞凋亡,過高加速衰老;
輕柔操作:
吸棄舊液或加新液時(shí)沿壁緩慢加入,避免直接沖擊細(xì)胞層;
培養(yǎng)環(huán)境:
置于37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱,CO2濃度必須精準(zhǔn)——無血清培養(yǎng)基緩沖能力弱,CO2波動(dòng)易致pH驟變。
三、換液與傳代管理
換液頻率:
每24–48小時(shí)更換一次,當(dāng)培養(yǎng)基明顯變黃(pH<7.0)或細(xì)胞密度>80%時(shí)必須換液;
傳代時(shí)機(jī):
細(xì)胞達(dá)70–80%融合時(shí)用無鈣鎂PBS輕洗,0.05%胰酶/EDTA消化3–5分鐘,避免過度消化損傷表面標(biāo)志物(如CD90、CD105);
終止消化:
加入含抑制劑的培養(yǎng)基(非血清),而非傳統(tǒng)FBS,防止成分干擾。
四、凍存與復(fù)蘇要點(diǎn)
凍存液配制:
使用專用無血清凍存液(含DMSO5–10%+保護(hù)劑),禁止直接用培養(yǎng)基+DMSO替代;
程序降溫:
采用–1℃/min降溫速率(可用凍存盒或程控儀),–80℃過夜后轉(zhuǎn)移至液氮長(zhǎng)期保存;
快速?gòu)?fù)蘇:
37℃水浴1–2分鐘迅速融化,立即離心去除DMSO,重懸于預(yù)熱培養(yǎng)基。